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一种能够用两种荧光颜色清楚区分和同时成像细胞膜脂筏与非脂筏微区的探针及其应用制造技术

技术编号:15292735 阅读:138 留言:0更新日期:2017-05-11 01:31
本发明专利技术公开了一种可以实时原位以两种荧光颜色清楚区分和同时成像细胞膜脂筏微区和非脂筏微区的单一荧光探针。该荧光探针是式(I)所述结构的化合物,其中R1表示2‑乙氧乙基、氨基烷基、羟烷基或烷基;R2和R3表示烷基。本发明专利技术还公开了所述荧光探针在实时原位以红绿两种荧光颜色标记活细胞细胞膜上的脂筏和非脂筏微区中的应用。该探针能够以红色荧光标记脂筏微区,同时以绿色荧光标记非脂筏微区,从而实现了两个微区的同时成像。相对于目前最常用的同类探针laurdan,本专利公开的探针具有两种微区的光谱差异更大,实现了两种微区的清楚区分和同时成像;其次内在化问题得到了改善,在应用时操作更加简便,商业化应用前景广阔。

【技术实现步骤摘要】

本专利技术涉及一种荧光探针,尤其涉及一种能够以两种荧光颜色清楚区分和同时成像细胞膜脂筏和非脂筏微区的单一荧光探针及其在标记活细胞细胞膜上的脂筏和非脂筏微区中的应用。
技术介绍
细胞膜的亚微结构近年来引起了人们广泛的关注。鞘磷脂等含有饱和脂肪酸侧链的磷脂和胆固醇一起可以形成致密排列的脂筏微区,而含有不饱和侧链的磷脂可以形成疏松排布的非脂筏微区。研究表明,脂筏微区与蛋白质团簇形成,信号转导,细胞凋亡以及病毒侵入过程密切相关。另一方面,非脂筏微区,由于其疏松的排布结构,在保持胆固醇平衡和细胞融合过程中起着重要的作用。两种微区含量的失衡会直接导致诸多疾病,例如非脂筏微区的增多会增加动脉硬化等疾病的风险。因此,实时原位的观测两种微区在生理学和病理学研究中具有重要的价值。荧光成像方法是对生物体系靶标进行原位观测的最优方法。搭配以合适的荧光探针,荧光成像方法可以完成对活细胞内靶标的实时原位观测,且操作简便。然而,目前能够同时双色成像细胞膜中脂筏和非脂筏微区的荧光探针紧缺,且目前的探针具有明显缺点。Laurdan及其衍生物是目前最常用来研究脂筏和非脂筏微区的荧光探针。它能够染色低极性的脂筏微区并呈现蓝色荧光(440nm),同时染色高极性的非脂筏微区并呈现绿色荧光(490nm)。然而laurdan具有明显的缺点:首先两种荧光波长差异较小,仅为50nm,这使其很难在细胞膜上清晰的区分两种微区;其次是它会很快内在化进入细胞,这也严重限制了它在成像研究中的应用。因此,开发能够以较大荧光波长差异区分两种微区,能够清楚区分和同时成像的细胞膜上脂筏和非脂筏微区的荧光探针需求迫切且势在必行。
技术实现思路
针对现有技术的不足,本专利技术要解决的问题是提供一种可以实时原位以两种荧光颜色清楚区分和同时成像细胞膜脂筏微区和非脂筏微区的单一荧光探针及其在标记活细胞细胞膜上的脂筏和非脂筏微区中的应用。本专利技术所述可以实时原位以两种荧光颜色清楚区分和同时成像细胞膜脂筏微区和非脂筏微区的单一荧光探针,其特征在于:所述荧光探针是式(I)所述结构的化合物:其中,上述R1表示2-乙氧乙基、氨烷基、羟烷基或烷基;R2或R3表示烷基。上述用于双色成像细胞膜脂筏和非脂筏的荧光探针中:所述R1优选表示2-乙氧乙基、氨烷基、羟烷基或C1-12烷基。所述R2和R3表示C10-20烷基。上述用于双色成像细胞膜脂筏和非脂筏的荧光探针中:所述R1最优选2-乙氧乙基,R2和R3最优选C12烷基,最优选的荧光探针是2,7-二(N-(1’-十二烷基)吡啶碘盐乙烯基)-N-乙氧乙基-咔唑(2,7-9E-BHVC12)。上述荧光探针即式(I)所述结构化合物的制备方法概述如下:首先是对二溴联苯硝基化生成4,4-二溴-2-硝基联苯;然后4,4-二溴-2-硝基联苯扣环得到2,7-二溴咔唑;2,7-二溴咔唑与碘代的氨基烷、羟基烷或烷烃在强碱催化下反应得到N-取代的2,7-二溴咔唑;接下来,N-取代的2,7-二溴咔唑与四乙烯基吡啶通过Heck反应可生成2,7-二吡啶乙烯基-N-取代咔唑;最后其与碘代烷烃加成反应即可得到终产物。具体的,上述2,7-二(N-(1’-十二烷基)吡啶碘盐乙烯基)-N-乙氧乙基-咔唑(2,7-9E-BHVC12)的制备反应式如下:2,7-9E-BHVC12的合成路线本专利技术所述荧光探针在实时原位以红绿两种荧光颜色标记活细胞细胞膜上的脂筏和非脂筏微区中的应用。其中:所述活细胞为宫颈癌细胞(HeLa)、宫颈鳞癌细胞(SiHa)或前列腺癌细胞(pc-3)细胞。实验结果证实,本专利技术所述双色荧光探针在致密的脂筏微区诱导下能够在其表面形成聚集体,并发出深红色荧光(650nm),同时该探针能够嵌入疏松的非脂筏微区形成单体状态,并发出绿色荧光(540nm)。本专利技术对所述荧光探针在细胞上的选择性经过了严格的证明。首先通过与商业化的脂筏染料进行复染实验,高的复染率(85%)证实了深红色荧光来自于细胞膜上的脂筏微区。另外,用MβCD处理细胞,消除细胞膜上脂筏微区后,细胞染色结果为绿光微区明显增多,红光微区明显减少,再次证明了本专利技术所述探针能够以红光标记脂筏微区,同时以绿光标记非脂筏微区。本专利技术的有益结果是:与目前常用的商业化同类染料laurdan相比,本专利技术所述荧光探针具有明显的优势。首先在脂筏微区和非脂筏微区探针的荧光发射波长差异较大(110nm),是laurdan的两倍以上,这使得本专利技术所述探针能够清楚地区分两种微区。另外相比于laurdan容易内在化的染色结果,本专利技术所述探针内在化问题较小,使其在实用中操作更加方便,且得到的结果更加可靠。另外探针的毒性低,生物相容性好。由于成像细胞膜亚微结构的重要意义,以及目前探针欠缺的形势,本专利技术所述探针应具有广阔的商业化前景。附图说明图1:用4μM的2,7-9E-BHVC12染色HeLa,SiHa以及pc-3细胞(a-c),得到的实彩成像图片,以及两种微区原位的荧光光谱(d-f)。其中d-f中以红色和绿色标记的荧光光谱是在a-c图片中红色和绿色箭头所指圆形区域内采集得到的。激发波长为488nm,红色微区为脂筏微区,绿色微区为非脂筏微区。图2:用4μM的2,7-9E-BHVC12以及1mg/mL的商业化脂筏探针CT-B591共同染色HeLa(a-c),SiHa(d-f)和pc-3(g-i)得到的荧光成像图片。其中a,d,g的激发波长为488nm,荧光收集波长为650-700nm;b,e,h的激发波长为561nm,荧光收集波长为600-650nm;c,f,i为前两者的叠加图片。共定位率为85%。图3:用4μM的2,7-9E-BHVC12染色HeLa,SiHa以及pc-3细胞,得到的实彩成像图片。其中a-c为未处理普通细胞的染色结果,d-f为用5mM的MβCD处理细胞1小时,消除脂筏微区后的染色结果。显然,消去脂筏微区后细胞绿光区域明显增多。图4:用4μM的2,7-9E-BHVC12染色HeLa细胞2小时、12小时和24小时后细胞的存活率。染色24小时后细胞存活率仍高达95%,说明探针的毒性很低。具体实施方式实施例14,4-二溴-2-硝基联苯(1)的合成将10g对二溴联苯溶解到120mL冰醋酸中,然后将溶液搅拌并加热到100℃。加入40mL发烟硝酸,体系反应30分钟。反应完成后,将溶液冷却至室温,,过滤可得粗产物。用乙醇重结晶可得纯净产物,产率91%。1HNMR(300MHz,CDCl3),δ(ppm):8.03(d,J=1.8Hz,1H),7.76(dd,J1=8.1Hz,J2=1.8Hz,1H),7.54–7.59(m,2H),7.31(s,1H),7.14–7.18(m,2H)。2,7-二溴咔唑(2)的合成将7.8g化合物1溶解到30mL亚磷酸三乙酯中并搅拌均匀。在氮气的保护下将上述体系加热到150℃,反应24小时。减压蒸馏整掉多余的溶剂后,剩余物用柱色谱分离提纯。最终得到一种白色固体为纯净产物,产率为48%。1HNMR(300MHz,DMSO-d6),δ(ppm):10.64(s,1H),8.09(d,J=8.4Hz,2H),7.75(d,J=1.8Hz,2H),7.37(dd,J1=8.4Hz,J2=1.8Hz,2H)。2,7-二溴-N-本文档来自技高网
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【技术保护点】
一种可以实时原位以两种荧光颜色清楚区分和同时成像细胞膜脂筏微区和非脂筏微区的单一荧光探针,其特征在于:所述荧光探针是式(I)所述结构的化合物:其中,上述R1表示2‑乙氧乙基、氨烷基、羟烷基或烷基;R2和R3表示烷基。

【技术特征摘要】
1.一种可以实时原位以两种荧光颜色清楚区分和同时成像细胞膜脂筏微区和非脂筏微区的单一荧光探针,其特征在于:所述荧光探针是式(I)所述结构的化合物:其中,上述R1表示2-乙氧乙基、氨烷基、羟烷基或烷基;R2和R3表示烷基。2.如权利要求1所述的荧光探针,其特征在于:所述R1表示2-乙氧乙基、氨烷基、羟烷基或C1-12烷基。3.如权利要求1所述的荧光探针,其特征在于:所述R2和R3表...

【专利技术属性】
技术研发人员:于晓强田明刚何秀全张若瑶
申请(专利权)人:山东大学
类型:发明
国别省市:山东;37

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