【技术实现步骤摘要】
本专利技术涉及从酵母细胞中提取蛋白质的一种方法。另一方面,本专利技术涉及破碎细胞来释放蛋白质(例如酶)的几种方法。更进一步,本专利技术还涉及从酵母中获取酶的方法。发酵技术与各种碳能培养基、特定的微生物菌株结合能够产生有用的胞内酶。人们迫切需要破碎细胞,获得细胞内所含的蛋白质,尤其是需要从中获取有用的酶,而酶本身没有遭到破坏。现已有各种破碎酵母细胞,以释放所含蛋白质,特别是酶的方法。机械破碎技术中包括了球磨、研磨、声波处理等,且常用冷却的办法来减少蛋白质的断裂。然而,机械破碎总是使酶发生降解,而得到极不均匀的细胞碎片混合物,这种混合物则很难同水溶性成分有效地分离开来。也可通过加酶来使细胞壁破坏或破碎,释放出细胞内含物。但是,所加的酶可能是昂贵的,同时也引进了异种蛋白质,带来一些不必要的分离问题,或者是在使用所需的酶的过程中引起一些不必要的副作用。已采用过化学方法来引起自溶作用(质壁分离),包括了各种碳氢化合物,例如甲苯;羰基化合物,它包括乙酸乙酯、丙酮,其它二烷基酮;以及其它化学物质,例如乙醚和醇,如C-C的烷基醇。这些化学方法的结果随所用的有机物,细胞生长条件,暴露时间和溶剂浓度而变化。其中有些方法是危险的,这是因为在所要求的处理温度下,挥发性可为燃烧,实际上是爆炸创造条件。一些方法需要高浓度的溶解剂,这势必在以后的纯化步骤中引起一些分离上的麻烦。利用安全的材料,温和的条件与最小的外加溶解成分,来获得从细胞中释放出蛋白质的良好结果的新方法仍然是当前的需要。专利技术人发现,某些在水中浓度相对来说十分低的多氯脂肪族处理剂,伴随几小时的大约在室温下的孵化就能导致酵 ...
【技术保护点】
从整体酵母细胞中回收蛋白质的一种方法包括,它包括:(a)形成一种已调过PH的水的混合物,它由含蛋白质的酵母细胞和大量的水溶液,以及较少的有较量的通常为液态的多氯脂肪族碳氢化合物处理剂所组成,其中所说的PH大约为6.5-8.5,而其中所说 的混合物含有0.8-6%(以体积计)的处理剂,(b)在温度约20-35℃,PH约6.5-8.5的条件下孵化所说的混合物16-90小时,由此,至少有一部分所说的蛋白质从所述细胞中释放到所述的水里,形成一种含蛋白质的水溶液,(c)分离液 体和固体材料,其中所述的液体中含蛋白质。
【技术特征摘要】
US 1985-6-10 742,836书。发酵描述下面所做的发酵描述代表几种类型的发酵过程,它们为进一步的处理提供含细胞的流出液,如以下实例所述。在一个连续的有氧发酵过程中,甲醇和无机盐水介质以40∶60的体积比分别投入到发酵罐中,用酵母种巴斯德毕赤酵母NRRL Y-11430接种,投入的速率恰使甲醇成为生长限制因素。发酵罐是一个1500升充满泡沫的发酵器,其中盛有液体610升,发酵罐可自动控制PH、温度和液面。用常用的浆型叶轮搅拌,转速1000转/分。通气速率为发酵罐中一体积的酵素每分钟通4体积空气(表压,约38镑/平方英寸;25℃)。无水氨按维持发酵混合物PH在3.5左右的速率加入。无机盐水介质的制备方法是将15.86毫升75%(以重量计)H3PO4、9.53克K2SO4、7.8克Mg SO4·7H2O、0.6克CaCl2·2H2O和2.6克85%(以重量计)KOH与一升自来水混合而成。无机盐水介质以31.5升/小时的速率投入,甲醇以21升/小时的速率投入。微量无机盐溶液(就一升溶液来说)是将65克FeSO4·7H2O,20克ZnSO4·7H2O,3.0克MnSO4·H2O,6.0克CuSO4·5H2O,5.0毫升浓H2SO4和足够的去离子水混合而制成1升溶液。加有酵母生长素的微量无机盐溶液是将780毫升微量无机盐溶液,20毫升水,200毫升甲醇和0.032克酵母生长素混合而制成的。加有酵母生长素的无机盐溶液的投入是借助于甲醇流,按每升甲醇10毫升这种溶液的比率单独投入。发酵在约30℃、38磅/平方英寸压力的条件下进行,平均滞留时间约为11.6小时,细胞密度一般是每升发酵器流出物含128.4克细胞。酵素总的固体量一般约为每升134.7克。所获得的酵母细胞可通过离心的方法从发酵流出物(水酵素)中分离出来,悬浮在水中洗涤,再离心分离,在100℃干燥过夜,称重。以干重计算,酵母细胞的产生率一般大约是每投入100克甲醇得40.6克细胞。实例1加足够稀的氢氧化钠,将巴斯德毕赤酵母NRRL Y-11430水浆或细胞浆的PH调到7.5,每升水浆或细胞浆大约含130克纯细胞,这种水浆或细胞浆基本上是按发酵描述部分所述的方法,从以甲醇作培养基的高细胞密度发酵过程中获得的。加0.5毫升所选用的处理剂到15毫升已调过PH的细胞浆内。所得处理混合物在室温下保存约两天,有时掺合一下。然后,对每个样品进行离心,测定上清液的醇氧化酶活性,获得如下结果表Ⅰ实验标号使用的溶剂醇氧化酶活性(a)1 水 无2 0.5克醋酸钠 很小3 四氢呋喃 很小4 己烷 很小5 氯仿 63.96 甲苯 6.47 乙醚 0.338 乙醚(0.1毫升) 很小9 0.6%叠氮化钠 很小10 二甲基亚砜 很小11 丙酮 很小12 1% Triton X-100(b)很小13 乙酸乙酯 很小(a)酶活力单位/毫升,按邻联(二)茴香胺/过氧化物酶法测定。(b)R-ohm-Haas表面活性剂。己烷和乙醚是已知的处理剂,它们用来作比较。显然,本发明中的第5号实验在所用的浓度范围内比其它一些的活性高几个数量级。实例Ⅱ加1.5毫升所选用的处理剂到50毫升已调过PH的巴斯德毕赤酵母细胞浆样品中,混合,室温下放置,样品的制备方法基本与上述方法相似。24小时以后,再加1.5毫升处理剂到己烷样品中。下面的第17号实验中加了3毫升乙醚,总孵化时间约48小时。其它样品的总孵化时间也为28小时,样品离心分离,按上述方法测定。表Ⅱ标号处理剂处理剂总量(毫升) 所得上清液醇氧化酶活性(a)14 己烷 3.0 0.4715 氯仿 1.5 189.716 乙醚 1.5 017 乙醚 3.0 219.618 甲苯 1.5 48.5(a)见表Ⅰ脚注(a)在高浓度时,加乙醚所得的上清液表现出相当大的醇氧化酶活性。这一既有的工艺方法因使用易燃、可能爆炸的材料而受到影响。本发明用氯仿的方法显示出非常高的活性,这与用乙醚的方法相似,而且本发明用的是一种在低浓度下相对安全的试剂。同时还应注意的是这些处理过的细胞能够离心沉淀,所需g力比机械破碎(珠研磨机或法兰四压榨器)细胞所需的力要小,而且产生非常好的上清液。己烷法和甲苯法实际上是无效的。实例Ⅲ巴斯德毕赤酵母NRRL Y-11430的生产仍基本上按上述方法进行。巴斯德毕赤酵母水浆每升约含130克细胞,0.01%(以重量计)的叠氮化钠,并按上述方法调PH至7.5,分别加入不同量的氯仿或二氯甲烷。将所得混合物室温放置约四天(96小时),有时振荡一下。然后,每个样品以13,000转/分的转速离心分离15分钟。上清液在4℃储存,约两天后,分析醇氧化酶。表Ⅲ50毫升毕赤酵母浆 醇氧化酶 溶液的颜色标号处理剂所加处理剂毫升数的测定(a)19 氯仿 0.5 366.8 深红20 氯仿 1.0 318.5 红21 氯仿 1.5 235.7 红22 二氯甲烷 0.5 311.6 深红23 二氯甲烷 1.0 149.5 红24 二氯甲烷 1.5 209.3 红(a)见表Ⅰ脚注(a)以上结果表明,无论是氯仿还是二氯甲烷都产生所需的含醇氧化酸上清液。看来在所用的相当长的孵化时间内,较小量的多氯化合物生产能力大。实例Ⅳ下面的实验仍然用上述的巴斯德毕赤酵母,实验过程也基本上与上面的相同。但是孵化时间是48小时,而不是上述实例的96小时。所得上清液在测定前在4℃保存两天。每个例子中的巴斯德毕赤酵母的体积仍是50毫升,每升约含130克细胞,结果如表Ⅳ所示表ⅣA50毫升毕赤酵母浆 醇氧化酶 溶液的颜色标号处理剂所加处理剂毫升数的测定(a)25 氯仿 0.5 147 亮橙色26 二氯甲烷 0.5 149 亮橙色27 二氯甲烷 0.2 很小 亮橙色28 1.1.1-三氯乙烷 0.5 159 亮橙色(a)见表Ⅰ脚注(a)每种多氯处理剂都是有效的。处理剂的最小用量很容易确定,如二氯甲烷的实验所示。重复以上实验,但孵化时间是三天而不是上述的两天,所得结果如表ⅣB所示表ⅣB50毫升毕赤酵母浆醇氧化酶测定(a)标号 处理剂 中处理剂的毫升数29 二氯甲烷 1.0 18630 二氯甲烷 0.5 7231 1,1,1-三氯乙烷 0.5 29832 乙醚 1.5 28933 无 - 2(a)见表Ⅰ脚注(a)这些比较结果说明,三氯乙烷和二氯甲烷是非常有效的。将这些结果与表ⅣA的结果比较,说明在二氯甲烷量较小(0.5毫升)时,较长的孵化时间可能并不好。实例Ⅴ用以下实验分析PH对溶剂诱导的酵母细胞自溶作用的影响。所选的酵母细胞仍是上述生长在以甲醇作碳能的培养基上的巴斯德毕赤酵母NRRL-Y-11430。对一组体积为50毫升的巴斯德毕赤酵母细胞,用氢氧化铵调PH,使其在6.5-8.0的范围内。每个样品每升约含130克细胞。在每个样品中加1.0毫升二氯甲烷。每个样品孵化两天。接着将每个样品离心分离,决定其上清液的醇氧化酶活性。所得结果如下表Ⅴ标号起始PH 孵化后的PH 醇氧化酶的测定(a)34 6.5...
【专利技术属性】
技术研发人员:索马斯R霍普金斯,
申请(专利权)人:菲利普石油公司,
类型:发明
国别省市:US[美国]
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