本发明专利技术涉及一种快速检测梅花鹿粘膜病病毒的胶体金试纸条，其特征在于：试纸条由样品垫、结合垫、硝酸纤维素膜、吸收垫依次粘附在不吸水的支撑薄片上；其中结合垫上包被有胶体金标记的BVDV单克隆抗体；硝酸纤维素膜上分别包被有BVDV纯化的多克隆抗体构成的检测线T线和葡萄球菌蛋白A(SPA)构成的质控线C线。其具有特异性强、灵敏度高、操作简单和诊断快速的显著优点，可用于梅花鹿粘膜病病毒的快速检测及疫病诊断。
【技术实现步骤摘要】
本专利技术涉及一种快速检测梅花鹿粘膜病病毒的胶体金试纸条，属于一种新的动物诊断试剂，应用于畜牧兽医学领域。本专利技术具有深远的研究性和广泛的应用性，包括对地区内梅花鹿粘膜病的流行病学调查，以及净化鹿场和快速对梅花鹿粘膜病进行诊断。
技术介绍
梅花鹿的粘膜病，其致病病毒为牛病毒性腹 写病毒(Bovine viral diarrheavirus, BVDV) /粘膜病病毒(mucosal disease virus MDV)。该病的主要特征是恶心、呕吐、腹痛、腹泻，排水样便或稀便，白细胞减少，粘膜溃疡，发热及全身不适等症状，更严重的是产生免疫耐受与免疫抑制、先天性缺陷等情况，还可以导致怀孕母鹿的流产。检测BVDV的方法有很多种，在早期，人们使用病毒分离、免疫荧光技术、ELISA等检测BVDV，但这些方法存在特异性不高，不能现场应用等实际问题。免疫胶体金技术(Immune colloidal goldtechnique)是以胶体金作为标记检测相应抗原或抗体的一种新型的免疫标记技术。氯金酸(HAuCl4)这种物质会与还原剂如白磷、鞣酸、枸橼酸钠等发生相互作用，最终聚合形成为大小固定的金颗粒，这些金颗粒由于静电作用相互吸附，会形成一种稳定的胶体状态，这种稳定的胶体状态称之为称为胶体金。在弱碱环境下，由于胶体金带负电荷，蛋白质分子上存在的正电荷基团，因此胶体金会与蛋白质分子形成牢固的静电结合，这种静电结合不会影响蛋白质的生物特性。胶体金不仅仅能与蛋白质相结合，还可以与如SPA、PHA、ConA等大分子相结合。由于胶体金与蛋白质结合物有着的一些独特的免疫和生物学特性，并且胶体金本身具有一些如高电子密度、形状及颜色反应等物理特性，因此在免疫学、组织学和细胞生物学等领域，胶体金得以广泛地应用。
技术实现思路
本专利技术的目的在于提供一种快速检测梅花鹿粘膜病病毒的胶体金试纸条，其利用免疫学抗原抗体能特异性结合原理，将单抗用胶体金标记后与抗原结合，这种抗原抗体结合物再与抗鹿粘膜病全病毒多抗结合，形成夹心单抗-抗原-多抗结合物在硝酸纤维素膜(NC膜)上出现颜色反应，可以肉眼观察；其特点有简单、快速和高特异性等。并且价格低廉，适用于基层或临床诊断鹿粘膜病。本专利技术的技术方案是这样实现的鹿粘膜病病毒的胶体金快速诊断试纸条，首先制备胶体金，最常用的制备方法为柠檬酸钠还原法，然后进行胶体金的标记，确定最佳标记蛋白量，选择合适的稳定剂，最后对标记好的胶体金进行纯化，制备试纸条；其特征在于试纸条由样品垫(I)、结合垫(2)、硝酸纤维素膜(3)、吸收垫(4)依次粘附在不吸水的支撑薄片(5)上；其中结合垫(2)上包被有胶体金标记的鹿粘病毒单克隆抗体；硝酸纤维素膜(3)上分别包被多克隆抗体构成的检测线T线(6)和葡萄球菌蛋白A(SPA)构成的质控线C线⑵。所述该纸条的检测方法是使用单克隆抗体技术制备抗鹿粘膜病毒的单克隆抗体，利用免疫学抗原抗体能特异性结合原理，胶体金标记抗原与抗体结合。由于毛细管作用，反应复合物沿包被膜向前泳动，若样品中存在鹿粘膜病病毒强毒株，到达检测线时遇到包被在硝酸纤维素膜上的兔抗鹿粘膜病全病毒多抗，就会形成金标单抗-鹿粘膜病病毒株-兔抗鹿粘膜病全病毒多抗复合物，从而凝集在检测线上，形成特异性的红色沉淀线；没有和鹿粘膜病病毒强毒结合金标单克隆抗体则会直接通过检测线，富集在质控线上形成红色沉淀线，即判为阳性结果。若样品中无鹿粘膜病病毒，反应复合物到达检测线时遇到捕获抗体就不会形成多抗-鹿粘膜病病毒-金标单抗复合物，反应复合物通过检测线，富集在质控线上，形成红色沉淀，即判为阴性结果。本专利技术的积极效果是 1、具有生物安全性，其所使用的金标单抗、兔抗鹿粘膜病多抗及羊抗鼠二体均为抗体，不含活病毒，因此不存在散毒的危险； 2、特异性强，胶体金试纸条金标抗体均为敏感性和特异性较好的单克隆抗体，因此提高了检测的敏感性和特异性； 3、生产成本低，金标单抗可由相应的杂交瘤细胞系通过注射Balb/c小鼠腹腔，诱生腹水，兔抗BVDV多抗可由鹿粘膜全病毒免疫新西兰白兔产生，二者通过辛酸-硫酸铵纯化而大量获得； 4、其可快速检测即5-10min;不需要特殊仪器和设备，可适用于现场操作；操作简单，一步完成，无需专业人员操作；检测成本低；储存方便。附图说明图I为本专利技术试纸条的实物图。图2为本专利技术试纸条结果判定示意图。具体实施例方式实施例I BVDV多克隆抗体纯化 取IOml免疫BVDV的新西兰白兔血清与等量O. 8%氯化钠溶液混合后，逐滴加入饱和硫酸铵溶液20ml，使成50%饱和度的硫酸铵溶液。4°C静止30min取出，4°C 3000rpm离心30min,弃上清,沉淀中加入20ml O. 8%氯化钠溶液；待沉淀溶解后，缓慢加入IOml饱和硫酸铵溶液，使成33%饱和度的硫酸铵溶液。4°C静止30min取出，4°C 3000rpm离心30min，弃上清，沉淀中加入Iml O. 8%氯化钠溶液,装入透析袋内用O. 8%氯化钠溶液透析除盐。用2%氯化钡溶液检测硫酸铵是否透析完全。透析完全后，蛋白溶液用PEG20000浓缩至适当体积，4°C 12000rpm离心lOmin，取上清，测定蛋白质含量，即为粗提的兔抗BVDV IgG。实施例2 BVDV免疫蛋白单克隆抗体的制备 I、动物免疫 先使用弗氏完全佐剂将纯化的BVDV完全乳化，再取6-8周龄健康Balb/C小鼠5只，共采取3次免疫，一免将完全乳化的免疫原，每只小鼠进行腹腔注射，大约IOOyg左右，在14d后实施加强免疫。二免以及三免以弗氏不完全佐剂将纯化的BVDV乳化，之后将对每只小鼠进行腹腔注射，大约ΙΟΟμ g。在三免后15d，取100 μ g纯化的病毒蛋白进行腹腔注射。在融合前3 4d左右，取50 μ g纯化的病毒蛋白进行尾静脉注射。2、分泌抗BVDV单克隆抗体杂交瘤细胞株的建立 将免疫合格的鼠脾细胞和SP2/0骨髓瘤细胞进行融合，加入适量的含HAT的选择性培养基进行培养，用纯化病毒进行间接ELISA筛选。反复筛选至所有孔显示阳性，并对这些杂交瘤细胞进行亚克隆，选择并确定可以稳定分泌抗体的阳性杂交瘤细胞株。3、抗体的纯化 选择体型较大的Balb/c小鼠，腹腔注射O. 5ml/只灭菌石蜡，7d_10d后，腹腔注射IXlO6个细胞/只阳性杂交瘤细胞，待小鼠腹部膨大后(约7d-10d)抽取腹水，以5000rpm离心5min,取上清液于_80°C保存备用。用蛋白A/G单克隆抗体纯化试剂盒对腹水进行纯化。实施例3金标单克隆抗体的制备 采用柠檬酸三钠还原法制备胶体金溶液。向99ml三蒸水中加入Iml浓度为10g/L的 氯金酸溶液加热至沸腾，迅速加入2. 4m/L 10. 5g/L柠檬酸三钠溶液，充分混匀，继续加热约5min-10min，溶液由蓝色变为红色即可。向50ml胶体金溶液中加入适量纯化后的抗BVDV单克隆抗体，室温搅拌30min,缓慢加入5ml 100g/L BSA继续搅拌30min。4000rpm离心IOmin,转移上清至另一离心管中，离心30min,小心弃去上清,用5ml 50mmol/LPBS重悬沉淀。将5X300mm的玻璃纤维棉浸泡于金标McAb溶液中，取出真空抽干后避光保存。实施本文档来自技高网...
【技术保护点】
一种快速检测梅花鹿粘膜病病毒的胶体金试纸条，其特征在于：试纸条由样品垫(1)、结合垫(2)、硝酸纤维素膜(3)、吸收垫(4)依次粘附在不吸水的支撑薄片(5)上；其中结合垫(2)上包被有胶体金标记的单克隆抗体；硝酸纤维素膜(3)上分别包被有纯化的BVDV多克隆抗体构成的检测线T线(6)和构成的质控线葡萄球菌蛋白A(SPA)C线(7)。
【技术特征摘要】
【专利技术属性】
技术研发人员：丁壮，董航，黄志强，
申请(专利权)人：吉林大学，
类型：发明
国别省市：
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