来源于人尿液细胞的外泌体的获取方法与应用技术

技术编号:14577675 阅读:111 留言:0更新日期:2017-02-07 20:56
一种人尿液来源细胞的外泌体的获取方法,是首先分离培养人尿液来源细胞并收集培养基,将人尿液来源细胞的培养基通过0.22微米滤膜过滤,以去除大的细胞残片以及其它杂质;然后离心除去细胞器,留取上清;再使用可截留100KD分子量的膜,通过离心截留上清中的外泌体,截留完成后,使用PBS对膜进行洗脱即得到外泌体浓缩液。本发明专利技术的外泌体可用于制备具有抗凋亡、促进血管新生、修复缺血损伤、促进细胞生长的药物,以及用于治疗皮肤缺损、皮肤溃疡、褥疮、骨缺损、骨不连、股骨头坏死、肾损伤、缺血性损伤、脊髓损伤、胰岛损伤、糖尿病及其并发症、阿尔茨海默氏症等。

【技术实现步骤摘要】

本专利技术涉及生物医学,尤其涉及一种来源于人尿液细胞的外泌体的获取方法与应用
技术介绍
近年的研究显示细胞移植治疗在修复各种组织器官损伤方面具有显著的效果和广阔的应用前景。但是,直接移植细胞用于人体疾病治疗还存在安全性、免疫排斥、成瘤隐患以及运输储存困难等诸多问题。近年的研究提示细胞发挥其修复组织损伤功能主要是通过旁分泌机制实现的,而旁分泌机制中细胞分泌的外泌体可能是细胞发挥功能的关键组分。外泌体为真核细胞的多泡体和胞膜融合后分泌到胞外的双层膜包裹的结构,它含有类似其来源细胞的胞膜成分、蛋白质及各种RNA组分,通过与细胞膜发生融合或者以靶受体的方式结合,在细胞与细胞之间传递细胞因子、蛋白质或者RNA等一系列生物活性物质,从而使靶细胞发生一系列生物学效应。最近的研究证实,人体多种细胞可分泌外泌体,人体体液中(血液、尿液、唾液、乳液)都含有外泌体,体外培养细胞的条件培养液中都存在由细胞分泌的外泌体;高效液相色谱分析证实不同细胞分泌的外泌体含有不同或不同剂量的蛋白质;芯片检测技术分析证实不同细胞分泌的外泌体含有不同或不同剂量的信使RNA和小RNA。因此,不同细胞来源的外泌体所发挥的生物学功能是不相同的,各有其独特性。从尿液中分离培养细胞,具有来源方便、可以大量获取、取材无创等优势。目前通过培养尿液来源细胞获得其外泌体并用于修复组织损伤及治疗疾病的方法尚未见报道。
技术实现思路
本专利技术的目的,就是为了提供一种来源于人尿液细胞的外泌体的获取方法与应用。为了达到上述目的,本专利技术采用了以下技术方案:一种来源于人尿液细胞的外泌体的获取方法,首先分离培养人尿液来源细胞并收集培养基,将人尿液来源细胞的培养基通过0.22微米滤膜过滤,以去除大的细胞残片以及其它杂质;然后离心除去细胞器,留取上清;再使用可截留100KD分子量的膜,通过离心截留上清中的外泌体,截留完成后,使用PBS对膜进行洗脱即得到外泌体浓缩液。将外泌体浓缩液转移至蔗糖/重水密度垫上离心分离,收集底部蔗糖/重水密度垫,加入两倍体积PBS,转移至可截留100KD分子的超滤细心管中离心分离;PBS洗涤3次,得到纯化的外泌体悬液。所述离心除去细胞器是4℃、10000g离心30分钟。所述离心截留上清中的外泌体是3500g离心15分钟。所述蔗糖/重水密度垫的密度为1.210g/cm3,其中的蔗糖的重量百分含量为30%;所述转移至蔗糖/重水密度垫上离心分离是4℃、100800g离心210分钟;所述转移至可截留100KD分子的超滤细心管中离心分离是4℃、3500g离心15分钟。所述人尿液来源细胞包括直接从尿液中分离的细胞;从尿液中分离并在体外培养的细胞;从尿液中分离并在体外培养且经过基因改造或药物处理的细胞;以及通过药物刺激引发泌尿系统细胞激活、游离至尿液中而获得的细胞。所述外泌体的标志物为CD9、CD11b、CD54、CD63、CD81、CD82以及与人尿液来源细胞特性相应的标志物。所述与人尿液来源细胞特性相应的标志物包括CD146、CD34、CD24、CD133、SIX2、PAX2、WT1、LHX1或OSR1。来源于人尿液细胞的外泌体可用于制备具有抗凋亡、促进血管新生、修复缺血损伤、促进细胞生长药物。来源于人尿液细胞的外泌体可用于治疗皮肤缺损、皮肤溃疡、褥疮、骨缺损、骨不连、股骨头坏死、肾损伤、缺血性损伤、脊髓损伤、胰岛损伤、糖尿病及其并发症、阿尔茨海默氏症。来源于人尿液细胞的外泌体可用于制备成含有来源于人尿液细胞的外泌体的复合物,将外泌体通过锚定或注入载体表面或内部,形成形状固定、可供植入的复合物,复合物植入后,其中的外泌体缓释或可控释放;所述复合物包括各种假体或支架。来源于人尿液细胞的外泌体可用于制备成含有来源于人尿液细胞的外泌体的敷料,将外泌体通过锚定或注入载体表面或内部,形成形状固定的敷料,敷料与组织粘附后,其中的外泌体可缓释、可控释放至组织内。来源于人尿液细胞的外泌体可用于制备成含有来源于人尿液细胞的外泌体的细胞培养添加剂,将外泌体悬液制备为细胞培养添加剂,用于细胞状态的维持或诱导分化。附图说明图1是外泌体的TEM照片。图2是可控电阻脉冲传感技术测定的外泌体粒度分布。图3是WesternBlot检测到的外泌体表面标志物。图4是复合人尿液来源细胞的外泌体的材料植入组14天后皮肤各部分组织的修复情况。图5是对照组14天后皮肤各部分组织的修复情况。图6是假手术组14天后皮肤各部分组织的修复情况。图7、图8是各组大鼠尿量和UACR比较,与Normal组比较,*P<0.05;与Diabetes比较,#P<0.05。图9-图15是流式细胞术检测HPDC凋亡结果。图16是HPDC在高糖诱导72小时后Caspase-3的蛋白表达水平。具体实施方式申请人已经建立从尿液中分离、扩增细胞的方法,并收集人尿液来源细胞(Urine-derivedCells,UCs)的技术体系。本专利技术人尿液来源细胞的外泌体的获取方法,是使用不同孔径的膜结构、通过离心截留UCs培养基中的外泌体。培养基首先通过0.22微米孔径滤膜过滤,以去除大的细胞残片、以及其它可能存在的杂质;然后,4℃10000g离心30分钟,除去细胞器,留取上清;使用可截留100KD分子量的膜、通过离心(3500g,15min)截留上清中的外泌体。截留完成后,使用PBS对膜进行洗脱即得到外泌体浓缩液。将浓缩液转移至6ml30%蔗糖/重水密度垫(1.210g/cm3),4℃100800g离心210分钟,收集底部5ml蔗糖/重水密度垫,加入两倍体积PBS,转移至可截留100KD分子的超滤细心管中,4℃3500g离心15min;PBS洗涤3次,最终按后续实验要求定容至一定体积,得到外泌体悬液,分装保存至-80℃环境中。外泌体可由透射电子显微镜观察(参见图1),其粒度分布由可控电阻脉冲传感技术测定(参见图2),直径范围50-150nm。其在悬液中可聚集为二聚体、乃至多聚体,因而粒度分布检测结果中亦包含200-300nm数据。其膜结构表面含有CD9、CD11b、CD54、CD63、CD81、CD82等标志物(参见图3),以及与人尿液来源细胞特性相应的标志物(可包含但不限于CD146,CD34,CD24,CD133,SIX2,PAX2,WT1,LHX1,OSR1)。其膜结构内包含蛋白、肽段、核酸等具有<本文档来自技高网...

【技术保护点】
一种来源于人尿液细胞的外泌体的获取方法,其特征在于,首先分离培养人尿液来源细胞并收集培养基,将人尿液来源细胞的培养基通过0.22微米滤膜过滤,以去除大的细胞残片以及其它杂质;然后离心除去细胞器,留取上清;再使用可截留100KD分子量的膜,通过离心截留上清中的外泌体,截留完成后,使用PBS对膜进行洗脱即得到外泌体浓缩液。

【技术特征摘要】
1.一种来源于人尿液细胞的外泌体的获取方法,其特征在于,首先分离培养
人尿液来源细胞并收集培养基,将人尿液来源细胞的培养基通过0.22微米滤膜过
滤,以去除大的细胞残片以及其它杂质;然后离心除去细胞器,留取上清;再使用
可截留100KD分子量的膜,通过离心截留上清中的外泌体,截留完成后,使用PBS
对膜进行洗脱即得到外泌体浓缩液。
2.如权利要求1所述的来源于人尿液细胞的外泌体的获取方法,其特征在于:
将外泌体浓缩液转移至蔗糖/重水密度垫上离心分离,收集底部蔗糖/重水密度垫,
加入两倍体积PBS,转移至可截留100KD分子的超滤离心管中离心分离;PBS洗
涤3次,得到纯化的外泌体悬液。
3.如权利要求1或2所述的来源于人尿液细胞的外泌体的获取方法,其特征
在于:所述人尿液来源细胞包括直接从尿液中分离的细胞;从尿液中分离并在体外
培养的细胞;从尿液中分离并在体外培养且经过基因改造或药物处理的细胞;以及
通过药物刺激引发泌尿系统细胞激活、游离至尿液中而获得的细胞。
4.如权利要求1所述的来源于人尿液细胞的外泌体的获取方法,其特征在于:
所述外泌体的标志物为CD9、CD11b、CD54、CD63、CD81、CD82以及与人尿液

【专利技术属性】
技术研发人员:汪泱牛鑫张长青李青胡斌姜珍珍
申请(专利权)人:上海市第六人民医院汪泱
类型:发明
国别省市:上海;31

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