一种非肝素抗凝血液样本的Th检测方法技术

技术编号:23083324 阅读:46 留言:0更新日期:2020-01-11 00:32
本发明专利技术公开了一种非肝素抗凝血液样本的Th检测方法,使用淋巴细胞分离液对非肝素抗凝的样本进行处理,获得外周血单个核细胞(PBMC),去除抗凝剂对细胞活化和细胞因子分泌的影响,同时在刺激/阻断阶段,加入血清,给细胞提供足够的营养物质;经抗体染色、固定破膜后,可成功用于Th细胞因子的检测,从而扩大了Th检测样本类型的范围。可使研究人员或检测人员充分利用样本进行Th检测,避免了因收集了非肝素抗凝的样本造成样本浪费和重复采集,大大提高了效率。

【技术实现步骤摘要】
一种非肝素抗凝血液样本的Th检测方法
本专利技术涉及一种非肝素抗凝血液样本的Th检测方法。
技术介绍
通常所说的Th1、Th2和Th17是指在各种生理与病理条件下有能力分化为Th1、Th2和Th17的T辅助细胞(严格意义上是Th0细胞)。静息状态(即未受任何刺激,如人的正常生理状态)下,Th0分化为Th1、Th2和Th17的能力非常弱,所以外周血中仅含有极少量的Th1、Th2和Th17细胞,这时所能检测到的IFN-γ、IL-4和IL-17A也微乎其微。而当Th细胞受到外界因素(如刺激素、病原体等)刺激,其中Th0即会向Th1、Th2或Th17分化,具体分化趋向取决于细胞因子的种类。此时,检测到的IFN-γ、IL-4或IL-17A也较多。实验中检测的Th1、Th2和Th17实际上是检测Th细胞对刺激素刺激的反应能力。通常选用的刺激素为Phorbol12-Myristate13-Acetate(PMA,佛波酯)和Ionomycin(离子霉素)。其中PMA为PKC(蛋白激酶C)的激活物,PKC则可激活下游众多的蛋白激酶的磷酸化,形成级联反应,导致许多蛋白的表达,进而引起T细胞的活化。在细胞内,PKC可被DAG(二脂酰甘油)和Ca2+的共同作用而激活,因此在Ionomycin(Ca2+的转运剂,可将细胞器内的Ca2+转运至胞浆内)的参与下,T细胞内PKC可被进一步激活。可见,PMA与Ionomycin协同活化T细胞。活化的T细胞可分泌多种细胞因子至细胞外,而流式细胞仪仅能检测细胞内的抗原,所以应将细胞因子阻断在胞内。细胞因子在高尔基体中合成,某些蛋白通过内质网运输以可溶性形式分泌至细胞外。破坏高尔基体即可切断细胞因子的转运途径,阻断其分泌。通常选用的阻断剂为BrefeldinA(BFA,布雷非德菌素A)和/或Monensin(莫能霉素)。传统的Th检测方法只能受限于肝素抗凝的全血,而其他类型的抗凝样本(如EDTA抗凝血、柠檬酸钠抗凝血)等则会影响Th细胞的活化和细胞因子的分泌,无法检测到细胞因子,使可测的样本类型受到了限制。对研究人员和检测人员来说,就会造成样本浪费或需重新采集的问题,大大影响效率。
技术实现思路
针对现有技术的不足,本专利技术提供了一种非肝素抗凝血液样本的Th检测方法,旨在解决非肝素抗凝血液样本在Th检测时,会影响Th细胞的活化和细胞因子的分泌,无法检测到细胞因子,使可测的样本类型受到了限制,造成样本浪费或需重新采集的问题。为实现上述目的,本专利技术提供如下技术方案:一种非肝素抗凝血液样本的Th检测方法,包括以下步骤:步骤一:用淋巴细胞分离液分离外周血单个核细胞(PBMCs),用含10%胎牛血清的培养基重悬沉淀,使细胞浓度为1×107/ml,取250μlPBMCs至流式管中,加入1μlPMA/IonomycinMixture(250×)和1μlBFA/MonensinMixture(250×),以只含PBMCs的样本作为对照,混匀,37℃孵育4-6小时,每隔1-2小时取出震荡混匀;步骤二:从样本管和对照管中取100μl细胞悬液至新的流式管中,加入相应的流式抗体,震荡混匀,室温避光孵育15分钟;步骤三:每管加入100μlFIX&PERMMediumA,震荡混匀,室温避光孵育15分钟;步骤四:用蒸馏水将10×FlowCytometryStainingBuffer稀释为1×,每管加入2ml预冷1×FlowCytometryStainingBuffer,300×g离心5分钟,弃上清;步骤五:每管加入100μlFIX&PERMMediumB和相应的流式抗体,震荡混匀,室温避光孵育15分钟;步骤六:每管加入2ml1×FlowCytometryStainingBuffer,300×g离心5分钟,弃上清。步骤七:每管加入500μl1×FlowCytometryStainingBuffer重悬,上机检测;或者加入500μl1-4%多聚甲醛重悬,2-8℃避光,于24小时内检测。进一步的,对于人血液样本,所述步骤一中采用人淋巴细胞分离液,步骤二中流式抗体为5μlAnti-HumanCD3,FITC和5μlAnti-HumanCD8α,PerCP-Cy5.5,步骤五中流式抗体为5μlAnti-HumanIFN-γ,PE和5μlAnti-HumanIL-4,APC。进一步的,对于小鼠血液样本,所述步骤一中采用小鼠淋巴细胞分离液,步骤二中流式抗体为5μlAnti-MouseCD3ε,FITC和5μlAnti-MouseCD4,PerCP-Cy5.5,步骤五中流式抗体为加入5μlAnti-MouseIFN-γ,PE。进一步的,对于大鼠血液样本,所述步骤一中采用大鼠淋巴细胞分离液,步骤二中流式抗体为5μlAnti-RatCD3,FITC和5μlAnti-RatCD8α,PerCP-Cy5.5,步骤五中流式抗体为5μlAnti-RatIFN-γ,efluor660。本专利技术的有益效果:使用淋巴细胞分离液对非肝素抗凝的样本进行处理,获得外周血单个核细胞(PBMC),去除抗凝剂对细胞活化和细胞因子分泌的影响,同时在刺激/阻断阶段,加入血清,给细胞提供足够的营养物质;经抗体染色、固定破膜后,可成功用于Th细胞因子的检测,从而扩大了Th检测样本类型的范围。可使研究人员或检测人员充分利用样本进行Th检测,避免了因收集了非肝素抗凝的样本造成样本浪费和重复采集,大大提高了效率。附图说明图1为本专利技术实施例1的Th检测结果图:图1.1为人EDTA抗凝全血的Th检测结果:A0:未刺激的人EDTA抗凝血来源的PBMCs染色IFN-γ;A1:PMA/Ionomycin刺激和BFA/Monensin阻断的人EDTA抗凝血来源的PBMCs染色IFN-γ。图1.2为小鼠EDTA抗凝全血的Th检测结果:A0:未刺激的小鼠EDTA抗凝血来源的PBMCs染色IFN-γ;A1:PMA/Ionomycin刺激和BFA/Monensin阻断的小鼠EDTA抗凝血来源的PBMCs染色IFN-γ。图1.3为大鼠EDTA抗凝全血的Th检测结果:A0:未刺激的大鼠EDTA抗凝血来源的PBMCs染色IFN-γ;A1:PMA/Ionomycin刺激和BFA/Monensin阻断的大鼠EDTA抗凝血来源的PBMCs染色IFN-γ。具体实施方式实施例1一种非肝素抗凝血液样本的Th检测方法,包括以下步骤:步骤一:用淋巴细胞分离液分离外周血单个核细胞(PBMCs),用含10%胎牛血清的培养基重悬沉淀,使细胞浓度为1×107/ml,取250μlPBMCs至流式管中,加入1μlPMA/IonomycinMixture(250×)和1μlBFA/MonensinMixture(250×),以只含PBMCs的样本作为对照,混匀,37℃孵育4-6小时,每隔本文档来自技高网
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【技术保护点】
1.一种非肝素抗凝血液样本的Th检测方法,其特征在于,包括以下步骤:/n步骤一:用淋巴细胞分离液分离外周血单个核细胞(PBMCs),用含10%胎牛血清的培养基重悬沉淀,使细胞浓度为1×10

【技术特征摘要】
1.一种非肝素抗凝血液样本的Th检测方法,其特征在于,包括以下步骤:
步骤一:用淋巴细胞分离液分离外周血单个核细胞(PBMCs),用含10%胎牛血清的培养基重悬沉淀,使细胞浓度为1×107/ml,取250μlPBMCs至流式管中,加入1μlPMA/IonomycinMixture(250×)和1μlBFA/MonensinMixture(250×),以只含PBMCs的样本作为对照,混匀,37℃孵育4-6小时,每隔1-2小时取出震荡混匀;
步骤二:从样本管和对照管中取100μl细胞悬液至新的流式管中,加入相应的流式抗体,震荡混匀,室温避光孵育15分钟;
步骤三:每管加入100μlFIX&PERMMediumA,震荡混匀,室温避光孵育15分钟;
步骤四:用蒸馏水将10×FlowCytometryStainingBuffer稀释为1×,每管加入2ml预冷1×FlowCytometryStainingBuffer,300×g离心5分钟,弃上清;
步骤五:每管加入100μlFIX&PERMMediumB和相应的流式抗体,震荡混匀,室温避光孵育15分钟;
步骤六:每管加入2ml1×FlowCytometryStainingBuffer,300×g离心5分钟,弃上清。
步骤七:每管加入500μl1×FlowCyt...

【专利技术属性】
技术研发人员:黄振宇
申请(专利权)人:杭州联科生物技术股份有限公司
类型:发明
国别省市:浙江;33

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