一种我国小麦根部禾谷多黏菌分型及其鉴定的方法技术

本发明专利技术涉及一种我国小麦根部禾谷多黏菌分型及其鉴定的方法，所述方法为利用禾谷多黏菌的特异性正向引物PSP2(f)和反相引物ITS4(r)对小麦根部基因组DNA进行PCR扩增，判断小麦根部是否存在禾谷多黏菌。再利用正向引物NS7(f)和反向引物ITS.CN(r)，及正向引物Pg.F2(f)和反向引物Pg.R2(r)确定禾谷多黏菌的分型。

【技术实现步骤摘要】
一种我国小麦根部禾谷多黏菌分型及其鉴定的方法
本专利技术涉及农作物病毒病害传播介体的分子检测技术，属于农业科学

技术介绍
禾谷多黏菌(Polymyxagraminis)是一种禾本科植物根部的专性寄生低等真核生物，自身对植物的生长不会产生明显的危害，但是它作为至少11种病毒的传播介体，传播的病毒可以在小麦、大麦、水稻等作物上引起多种病毒病害。因其活体寄生特性，不能进行室内离体培养，休眠孢子壁厚，抗逆性强，能在土壤中存活十多年，导致对禾谷多黏菌的研究十分困难，进展缓慢。通过世界范围内的大量采样和鉴定，明确了禾谷多黏菌传播的麦类病毒主要隶属于Bymovirus属和Furovirus属。在我国的冬麦区，禾谷多黏菌主要传播小麦上的小麦黄花叶病毒(WYMV)和中国小麦花叶病毒(CWMV)，引起小麦植株分蘖减少，矮化发黄等症状，发病严重时可导致减产50-70％，危害巨大。多黏菌下有两个种，禾谷多黏菌和甜菜多黏菌。这两个物种最初主要是通过形态及宿主区分，禾谷多黏菌主要侵染禾本科作物，而甜菜多黏菌的寄主则是藜科植物。由于禾谷多黏菌基因组信息未知，目前其种下的分类主要依赖于核糖体DNA(rDNA)的ITS1和ITS2区域序列。1994年Ward等利用限制性片段长度多态性(RFLP)技术，首次通过ITS区分了这两种多黏菌，同时通过序列分析发现禾谷多黏菌存在两种核糖体分型。随后，Ward和Adams在印度高粱上发现了禾谷多黏菌的第三种分型。随着越来越多的禾谷多黏菌ITS的揭示，Ward等将非洲地区、亚洲日本地区样品和其余地区已知的禾谷多黏菌ITS序列进行系统进化分析后发现目前共有6种禾谷多黏菌分型(I型–VI型)。2003年Legreve及她同事的研究则表明禾谷多黏菌的分型依据除了ITS序列外，不同地区来源的禾谷多黏菌分型对宿主及温度也有不同要求，在分型中也需予以考虑。来源于印度的禾谷多黏菌在高粱上完成整个生活史的最佳温度是27-30℃，23-26℃休眠孢子的萌发及各个阶段的发育速度减缓，19-22℃侵染不显著，19℃以下无侵染。而温带地区来源的禾谷多黏菌在大麦上的最佳温度是15-18℃，19-22℃侵染率明显降低，22℃以上侵染不显著。因此，Legreve根据其研究结果对禾谷多黏菌进行分型的时候除考虑ITS序列外，还加入了宿主及温度因素，将禾谷多黏菌分为了五种类型(f.sp.temperate,f.sp.tepida,f.sp.tropicalis,f.sp.subtropicalis,f.sp.colombiana)。虽然目前这两个分类系统未统一，但其对应关系非常明显。虽然早在上世纪80年代已经明确我国冬小麦区的小麦黄花叶病的传播媒介是土壤中的禾谷多黏菌，但对禾谷多黏菌的研究极少，我国禾谷多黏菌存在哪些分型目前也未知，同时不清楚其分型与传播的小麦病毒种类是否有关。因此，明确我国小麦黄花叶病爆发区域禾谷多黏菌的分型有助于为土传小麦黄花叶病的防控提供依据。
技术实现思路
本研究提供了一种中国禾谷多黏菌分型快速鉴定和区分的方法。根据禾谷多黏菌核糖体DNA序列，利用已知的禾谷多黏菌引物对我国的冬麦区小麦根部DNA进行扩增，筛选适用于我国禾谷多黏菌分型的引物，同时针对我国特有的禾谷多黏菌分型设计特异性的反向引物ITS.CN，并对PCR的反应体系及扩增条件作大量优化，最终获得能稳定扩增和鉴别我国两种禾谷多黏菌分型的方法。本专利技术的研究人员首先利用欧洲地区检测禾谷多黏菌核糖体DNA(rDNA)ITS2区域的通用引物PSP2(f)和ITS4(r)对源于我国小麦黄花叶病区的小麦根部基因组DNA进行PCR扩增(PCR产物约250bp)，扩增产物测序并根据ITS2区域进行系统进化分析，初步明确我国冬麦区禾谷多黏菌至少存在两种分型，一种和已报道的I型具有一定同源性，为我国特有的分型，命名为I-CN型菌，另一种为II型菌。为进一步得到禾谷多黏菌rDNA的完整ITS序列(包括ITS1和ITS2)用于区分两种菌型，使用欧洲地区已报道的ITS序列的通用正向引物NS5(f)，NS7(f)，PSP1(f)，ITS5(f)和反向引物ITS4(r)组合进行扩增。但主要扩增到小麦的rDNA序列，均未能稳定特异地扩增到禾谷多黏菌ITS序列。因此，本专利技术的研究人员设计了大量的引物，最终筛选得到一条反向引物ITS.CN(r)，利用正向引物NS7扩增包含ITS1的约800bp序列，可以用于检测I-CN型菌的特异性引物。另外，利用II型菌引物Pg.F2(f)和Pg.R2(r)扩增得到II型菌特异的ITS序列，PCR产物长度为430bp。具体的本专利技术采用如下技术方案：1.样品的采集采集田间发病小麦样品，通过RT-PCR检测叶片病毒以及显微镜观察根部禾谷多黏菌的休眠孢子情况，明确样品根部含有禾谷多黏菌。2.我国禾谷多黏菌分型的确定首先利用引物组合PSP2(f)和ITS4(r)扩增小麦根部禾谷多黏菌ITS2序列，测序明确具体的扩增序列，利用NCBI上已知的禾谷多黏菌分型构建进化树，明确我国禾谷多黏菌分型为I-CN型和II型。3.分型的特异性引物设计根据我国特有的分型I-CN型的序列特点设计引物ITS.CN(r)，结合正向引物NS7(f)PCR特异性扩增I-CN型。利用Pg.F2(f)和Pg.R2(r)PCR特异性扩增II型菌。4.引物的特异性验证提取含有不同分型禾谷多黏菌的小麦病根总DNA作为模版PCR扩增验证引物特异性，最终明确检测禾谷多黏菌的特异性引物为PSP2(f)和ITS4(r)，检测禾谷多黏菌I型菌的特异性引物为Ns7(f)和ITS.CN(r)，检测禾谷多黏菌II型菌的特异性引物为Pg.F2(f)和Pg.R2(r)。5.反应体系及扩增条件的优化对影响PCR扩增的各个条件：包括退火温度、引物浓度、HiFiDNA聚合酶浓度、dNTP浓度、延伸时间及循环次数等方面进行优化，最终确定适合本研究的最佳PCR体系为：10×PCRBuffer1μL，dNTP2mM1μL，上游引物10μM0.25μL，下游引物10μM0.25μL，DNA1.0μL，HiFiDNApolymerase5U/μL0.25μL，ddH2O6.25μL，终体积为10μL；最佳PCR扩增程序为：94℃预变性3min；94℃变性30s，58℃退火50s，72℃延伸时间根据引物不同分别为：PSP2(f)和ITS4(r)延伸20s，Ns7(f)和ITS.CN(r)延伸60s，Pg.F2(f)和Pg.R2(r)延伸30s，共进行35个循环；最后72℃延伸10min。5.在研究中的应用应用该技术对我国冬小麦区的禾谷多黏菌分型情况进行了较全面的调查，样品来源包括山东、河南、江苏、安徽和湖北五个省份土传小麦黄花叶病病区的66个小麦病根样品，明确了各地样品带禾谷多黏菌及其分型的情况。采用本专利技术的技术方案，可以获得如下的技术效果：1.获得了鉴定禾谷多黏菌I-CN型和II型的特异性引物；2.获得了稳定的检测禾谷多黏菌I-CN型和II型菌的PCR体系。附图说明图1用于检测的三对引物在禾谷多黏菌核糖体DNA上的位置示意图(PSP2和ITS4为禾谷多黏菌特异性引物；NS7和ITS.CN为禾谷多黏菌I-CN型特异性引物；P本文档来自技高网...

【技术保护点】
一种我国小麦根部禾谷多黏菌分型(I‑CN型)，其特征在于，具有SEQ ID NO：11表示的核苷酸序列。

【技术特征摘要】
1.一种我国小麦根部禾谷多黏菌分型(I-CN型)，其特征在于，具有SEQIDNO：11表示的核苷酸序列。2.权利要求1所述的禾谷多黏菌分型的特异性反向引物，其特征在于，具有ITS.CN(r)表示的核苷酸序列。3.权利要求1所述的禾谷多黏菌分型的一对特异性引物，其特征在于，具有正向引物NS7(f)和反向引物ITS.CN(r)。4.一种对小麦根部禾谷多黏菌的检测方法，其特征在于，利用正向引物NS7(f)和反向引物ITS.CN(r)明确禾谷多黏菌的分型(I-CN型)。5.一种对小麦根部禾谷多黏菌的检测方法，其特征在于，利用禾谷多黏菌的特异性引物PSP2(f)和ITS4(r)对引物对小麦根部基因组DNA进行PCR扩增，判断小麦根部是否存在禾谷多黏菌。再利用正向引物NS7(f)和反向引物ITS.CN(r)明确禾谷多黏菌的分型。6.一种对小麦根部禾谷多黏菌的鉴定方法，其特征在于，利用禾谷多黏菌的特异性引物PSP2(f)和ITS4(r)对引物对小麦根部基因组DNA进行PCR扩增，判断小麦根部是否存在禾谷多黏菌。再利用正向引物NS7(f)和反向引物ITS.CN(r)，及正向引物Pg.F2(f)和反向引物Pg.R2(r)明确禾谷多黏菌的分型。7.根据权利要求4-6任一权利要求所述的鉴定方法，其特征在于，P...

【专利技术属性】
技术研发人员：李俊敏，胡立峰，徐雨，孙宗涛，羊健，陈剑平，
申请(专利权)人：浙江省农业科学院，
类型：发明
国别省市：浙江,33