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用于产α-淀粉酶的菌株和α-淀粉酶的分离纯化方法技术

技术编号:19478055 阅读:42 留言:0更新日期:2018-11-17 09:23
本发明专利技术公开了一种不依赖钙离子α‑淀粉酶的分离纯化方法,将10%(v/v)芽孢杆菌(Bacillus sp.)BH 072种子液接于LB产酶发酵培养基中,在初始培养温度为37℃,摇床转速160rpm条件下,培养24h,得到粗酶液。采用硫酸铵沉淀法至溶液硫酸铵终饱和浓度达到80%(w/v)使酶充分沉淀,复溶,透析;利用阴离子交换层析和凝胶过滤层析等步骤纯化α‑淀粉酶,同时进行酶学性质分析,纯α‑淀粉酶的分子量为68kDa,比酶活为975U/mg,纯化倍数达到21.2倍,最适pH为6.5、最适温度为65℃,且α‑淀粉酶活性不依赖钙离子。本方法得到的α‑淀粉酶纯度高、纯化倍数高。

【技术实现步骤摘要】
用于产α-淀粉酶的菌株和α-淀粉酶的分离纯化方法
本专利技术涉及一种不依赖钙离子α-淀粉酶的分离纯化方法。
技术介绍
α-淀粉酶是一种普遍存在于自然界中的淀粉酶,其来源十分丰富。作为一种具有最长研究历史的酶类,现已报道可以大量从动物、植物和微生物中提取α-淀粉酶。19世纪20年代开始,工业α-淀粉酶研究领域蓬勃发展,微生物来源的α-淀粉酶研究受到重视,现已陆续分离出来自细菌、真菌和酵母等不同微生物来源的α-淀粉酶。随着纯化手段的发展,α-淀粉酶研究领域向更加精确化方向不断深化。同时,纯化的α-淀粉酶通过蛋白质序列分析技术,可得到相应氨基酸和基因序列,他们作为分子生物学基础,为α-淀粉酶的结构、功能和基因调控、表达等机理研究提供依据。作为酶学研究极其重要的基础部分,为不同特性的α-淀粉酶探索便捷、高效且经济的分离纯化方法一直是国内外相关研究的重点内容。
技术实现思路
为了解决现有技术中的问题,本专利技术提供一种用于产α-淀粉酶的菌株和α-淀粉酶的分离纯化方法,解决现有技术中α-淀粉酶分离纯度和回收率不高的问题。本专利技术的技术方案为:一种用于产α-淀粉酶的菌株,其芽孢杆菌BH072,分类命名:芽孢杆菌(Bacillus),现于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(CGMCC)保藏,保藏中心登记入册编号为CGMCCNo.8473。保藏时间为2013年11月15日,地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所,邮编100101。一种不依赖钙离子α-淀粉酶的分离纯化方法,包括粗酶液制备、硫酸铵沉淀、阴离子交换层析、凝胶过滤层析和酶学性质分析的步骤。一种不依赖钙离子α-淀粉酶的分离纯化方法,按以下步骤进行:1)种子活化:将Bacillussp.BH072接种于液体LB培养基,37℃培养12h;2)发酵培养:将10%(v/v)种子液接种到产酶发酵培养基中,37℃,160rmp培养24h;3)粗酶液的制备:将发酵液进行冷冻高速离心,取上层清液;4)硫酸铵沉淀:取上清粗酶液缓慢加硫酸铵饱和溶液,至溶液硫酸铵终饱和浓度达到80%(w/v)使其充分沉淀,离心后将沉淀溶于pH6.5的磷酸缓冲液中,充分复溶后透析、聚乙二醇20000浓缩,即为粗酶液;5)阴离子交换层析:将粗酶液上样到阴离子交换柱中,用pH6.5磷酸缓冲液平衡,用0-1mol/LNaCl缓冲液,1.5mL/min流速线性洗脱,边洗脱边测量280nm处的吸光度,收集洗脱峰内的液体;6)凝胶过滤层析:将步骤5)收集的液体上样至凝胶过滤层析柱中,用相同缓冲液,0.5mL/min洗脱,边洗脱边测量280nm处的吸光度,收集洗脱峰内的液体,即为纯酶液。有益效果:本专利技术通过系列生物化学技术获得菌株发酵产物α-淀粉酶,采用现代提取技术对发酵液提取纯化获得高纯度及高回收率的α-淀粉酶。经过系列实验验证,说明所获的α-淀粉酶菌株具有不依赖钙离子的特性。附图说明图1Bacillussubsp.BH072菌体生长曲线;图2硫酸铵浓度-淀粉酶活力回收曲线;图3DEAESepharoseFastFlow阴离子交换层析洗脱图谱;图4SephadexG-100凝胶过滤层析洗脱图谱;图5pH对Bacillussubsp.BH072淀粉酶活性的影响;图6温度对Bacillussubsp.BH072淀粉酶活性的影响;图7金属离子对Bacillussubsp.BH072淀粉酶活性的影响;图8纯化过程SDS-PAGE电泳图谱。具体实施方式实施例1:一种α-淀粉酶的发酵方法本实施例一种α-淀粉酶的发酵方法,按以下步骤进行:1)制备种子液将Bacillussubsp.BH072接种于液体LB培养基中,160rmp培养12h至对数生长期,即为种子液。2)发酵培养将种子液按10%(v/v)的接种量接入液体产酶发酵培养基,37℃,160rmp培养24h。取发酵液4℃,11000rmp离心15min,取上层清液即为粗酶液,所得粗酶液4℃保藏备用。实施例2:一种α-淀粉酶的分离纯化方法1)硫酸铵分级沉淀上清粗酶液中加入饱和硫酸铵溶液至80%(w/v)饱和硫酸铵浓度,4℃过夜沉淀。将溶液11000rmp,4℃离心20min,弃上清,收集沉淀。将沉淀用pH6.5磷酸缓冲液充分复溶后,装于透析袋中4℃过夜透析,每3h换一次去离子水,除去粗酶液中大量硫酸铵,并用聚乙二醇20000浓缩。2)DEAESepharoseFastFlow阴离子交换层析将浓缩所得粗酶液以0.5mL/min上样至经pH6.5磷酸缓冲液平衡好的DEAESepharoseFastFlow阴离子层析柱(2cm*40cm),用0-1mol/LNaCl缓冲液,1.5mL/min流速线性洗脱,边洗脱边测量280nm处的吸光度,收集洗脱峰内液体,测量α-淀粉酶酶活,合并活性峰收集液装于透析袋中,利用聚乙二醇20000浓缩。3)SephadexG-100凝胶过滤层析将上述浓缩酶液,上样至经pH6.5磷酸缓冲液平衡的SephadexG-100凝胶层析柱(2cm*60cm),并用相同缓冲液,0.5mL/min洗脱,边洗脱边测量280nm处的吸光度,收集洗脱峰内的液体,测量α-淀粉酶酶活。将收集液装于透析袋中,利用聚乙二醇20000浓缩,得到纯α-淀粉酶。4)SDS-PAGE凝胶电泳采用10%分离胶,5%浓缩胶。取酶液20μL与5μL5×样品缓冲液混合,100℃煮沸5min,12000rmp离心5min上样。浓缩胶电压为80V,分离胶电压为120V。用考马斯亮蓝R-250染色电泳后凝胶。分子量标准从大到小依次为:116.0、66.2、45.0、35.0、25.0(单位kDa)。本实施例获得的α-淀粉酶的分子量为68kDa,比酶活975U/mg,纯化倍数达到21.2倍。实施例3:一种α-淀粉酶的酶学性质1)α-淀粉酶的最适pH在不同pH值(pH4.5-10.0)缓冲液配置的1%(w/v)可溶性淀粉溶液中,加入等量的酶,用DNS法测定65℃时淀粉酶活力,绘制pH-酶活曲线,确定酶的最适pH。2)α-淀粉酶的pH稳定性将α-淀粉酶分别加于不同pH值的缓冲体系中,65℃保温1h,备用。用pH6.5的1%(w/v)可溶性淀粉溶液作为底物,加入保温后的酶液,测定酶的剩余酶活。缓冲体系(100mM)分别为:醋酸酸缓冲液(pH4.5-6.0),磷酸缓冲液(pH6.0-7.5)Tris-HCl缓冲液(pH7.5-9.0),氨基乙酸-NaOH缓冲液(pH9.0-11.0)。3)α-淀粉酶的最适温度用DNS法测定酶在pH6.5的可溶性淀粉底物溶液中,不同反应温度(30-90℃)下的酶活,绘制温度-酶活函数线,确定酶的最适反应温度。4)α-淀粉酶的热稳定性将α-淀粉酶加于pH6.5的磷酸缓冲液中,分别于30-90℃保温1h,立即于冰水中冷却,备用。用DNS法测定剩余酶活。5)金属离子对α-淀粉酶的影响在酶活测定反应体系中分别加入终浓度为5mmol/L钙、钠、锰、镁、钾、铜、亚铁、锌离子的氯化物,4℃静置1h,测定酶活。本实施例获得的不依赖钙离子α-淀粉酶的分子量为68kDa,比酶活975U/mg,纯化倍数达到21.2倍,最适pH为6.5,最适温度为65℃,Na+显著促进α-淀本文档来自技高网...

【技术保护点】
1.一种用于产α‑淀粉酶的菌株,其特征在于:为芽孢杆菌BH 072,于2013年11月15日保藏至中国普通微生物菌种保藏管理中心,保藏编号为CGMCC NO.8473。

【技术特征摘要】
1.一种用于产α-淀粉酶的菌株,其特征在于:为芽孢杆菌BH072,于2013年11月15日保藏至中国普通微生物菌种保藏管理中心,保藏编号为CGMCCNO.8473。2.一种α-淀粉酶的分离纯化方法,其特征在于:包括粗酶液制备、硫酸铵沉淀、阴离子交换层析、凝胶过滤层析和酶学性质分析的步骤。3.根据权利要求2所述的α-淀粉酶的分离纯化方法,其特征在于:采取芽孢杆菌BH072为出发菌株按一下步骤进行:1)菌株活化:将Bacillussp.BH072接种于液体LB培养基,在37℃培养12h;2)发酵培养:将种子按体积比10%接种到发酵培养基中,37℃,160rmp培养24h;3)粗酶液的...

【专利技术属性】
技术研发人员:周志江潘磊杜仁鹏赵芳坤张巧格韩烨
申请(专利权)人:天津大学
类型:发明
国别省市:天津,12

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